功能作用：
生物化学与分子生物学实验室是为研究生和本科生进行实验教学、学生进行实验方法和实验技能系统训练的提供场所。学生通过自己动手获取相关知识、扩大知识视野，增强实验技能。以科研促进教学，将科研方面取得的、成熟的新实验技术引入学生实验教学中，培养科研方法和科研思路和。实验室为临床医学5+3一体化、实验室面向临床医学、基础医学、口腔医学、预防医学、康复医学、麻醉学、药学、药物制剂等二十多个专业开课，承担《生物化学与分子生物学实验》、《基础医学综合实验》、《基础医学实验基本技能》、《分子生物学新技术》等5门本科课程以及《高级生物化学》、《S1核酸技术》、《S2蛋白质技术》等3门研究生课程，共开设20多个实验项目，每年完成约12万生学时数的实验教学量。
实验项目：
生化与分子生物学实验室：生物化学与分子生物学4项18学时、5项36学时、 Biochemistry and Molecular Biology4项36学时、高级生物化学3项12学时、分子生物学实验技术2项36学时、基础医学综合实验（生化部分）2项18学时、基础医学实验基本技能4项16学时、分子生物学新技术7项54学时、核酸技术4项28学时、蛋白技术1项7学时。
实验项目、类型和内容：
类型 | 顺序 | 实验项目 | 学时 | 实验内容 |
生物化学与分子生物学 | 1 | 分光光度法 | 4 | 1.生化实验技能和基本操作：玻璃器皿的洗涤与干燥，移液器的使用，溶液的混匀，离心机的使用，生物大分子的制备与鉴定 2.分光光度法原理及可见、分光光度计的使用 |
2 | 双缩脲法测定蛋白质含量 | 4 | 双缩脲法测定蛋白质浓度的原理和标准曲线的绘制 | |
3 | 酶Km值的测定 | 5 | 酶的底物专一性 /PH、温度、激活剂与抑制剂对酶活力的影响 | |
4 | 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 5 | 1.聚丙烯酰胺凝胶电泳原理和方法 2.LDH同工酶分离方法 | |
生物化学与分子生物学 | 1 | 分光光度法与蛋白质含量测定 | 5 | 1.生化实验技能和基本操作 2.分光光度法原理及可见、分光光度计的使用3.双缩脲法、 Lowry法、紫外分光光度法、考马斯亮兰结合法测定蛋白质浓度及特点 |
2 | 碱性磷酸酶动力学分析 | 5 | 1.底物浓度对酶促反应速度的影响 2.酶Km值的测定原理并通过实验求出酶Km值 3.酶抑制剂型别的判定 | |
3 | 蛋白质的电泳技术 | 8 | 1.SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 2.测定蛋白质分子量 | |
4 | 代谢综合实验（激素对血糖的影响，血脂的测定） | 9 | 1.通过动物实验掌握体内代谢研究方法 2.了解胰岛素对血糖、血脂浓度的影响及其机制 3.邻甲苯胺法和葡萄糖酶法测定血糖的方法原理及临床意义、血脂测定 | |
5 | 逆转录PCR法分析鼠肝糖代谢基因转录水平 | 9 | 1.肝组织RNA的提取、RNA分离纯化的原理和方法 2.聚合酶链反应的原理和方法、PCR扩增仪，荧光分析仪的使用 3.琼脂糖凝胶电泳技术 | |
Biochemistry and Molecular Biology | 1 | Spectrophotometric techniques 分光光度技术 | 9 | 1.生化实验技能和基本操作：玻璃器皿的洗涤与干燥，移液器的使用，溶液的混匀，离心机的使用，生物大分子的制备与鉴定 2.分光光度法原理及可见、分光光度计的使用 |
2 | Analysis of enzyme kinetics 酶动力学分析 | 9 | 1.底物浓度对酶促反应速度的影响 2.酶Km值的测定原理并通过实验求出酶Km值 3.酶抑制剂型别的判定 | |
3 | Techniques of protein purification and characterization 蛋白质纯化与鉴定技术 | 9 | 1.SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 2.测定蛋白质分子量 | |
4 | Polymerase chain reaction 聚合酶链反应 | 9 | 1.肝组织RNA的提取、RNA分离纯化的原理和方法 2.聚合酶链反应的原理和方法、PCR扩增仪，荧光分析仪的使用 3.琼脂糖凝胶电泳技术 | |
高级生物化学 | 1 | GST-融合蛋白的分离纯化 | 4 | GST蛋白的分离纯化方法、融合蛋白的诱导表达 |
2 | 分离蛋白的纯度鉴定 | 4 | 利用SDS-PAGE方法鉴定蛋白纯化 | |
3 | 分离蛋白的生物学活性 | 4 | 酶活性测定的新型实验方法：微量法检测碱性磷酸酶的活性 | |
分子生物学实验技术 | 1 |
| 13 | 1.碱裂解法提取质粒DNA 2.琼脂糖凝胶电泳观察、判断提取结果 3.细菌感受态的制备 4.质粒转化原理、摇菌及涂板 5.蓝-白筛选的原理、结果分析 |
2 |
| 13 | 1.肝组织中基因组DNA的提取 2.DNA限制性内切酶酶切分析 3.电泳观察酶切条带 4.RNA分离纯化的原理和方法、定量技术 5.聚合酶链反应的原理和方法 6.PCR扩增仪，荧光分析仪的使用 | |
基础医学综合实验 | 1 | 感受态细菌的制备、转化和筛选 | 9 | 1.细菌感受态的制备 2.质粒转化原理、摇菌及涂板 3.蓝-白筛选的原理、结果分析 |
2 | 质粒DNA的提取和DNA限制性内切酶消化 | 9 | 1.碱裂解法提取质粒DNA 2.琼脂糖凝胶电泳观察、判断提取结果 | |
基础医学实验基本技能 | 1 | 生化常规玻璃器皿处理及常用溶液配制 | 4 | 1.生化与分子生物学实验室的一般操作及安全规则； 2.实验室常用玻璃仪器分类； 3.生化常规玻璃器皿的处理和使用以及常用溶液的配制。 |
2 | 核酸的分离与鉴定 | 4 | 1.琼脂糖凝胶电泳分离核酸的原理和方法; 2.核酸染色的方法。 | |
3 | 聚丙烯酰胺凝胶电泳（LDH） | 4 | 1.聚丙烯酰胺凝胶电泳原理和方法; 2.乳酸脱氢酶同工酶分离方法和显色原理。 | |
4 | 胶回收 | 4 | 1.DNA片断纯化的原理和方法； 2.利用试剂盒从凝胶中回收DNA产物的方法。 | |
分子生物学新技术 | 1 | 1. 质粒DNA的提取和纯化 2.DNA电泳检测，纯度和浓度的测定 | 8 | 1.碱裂解法提取质粒DNA 2.琼脂糖凝胶电泳观察、判断提取结果 |
2 | 1. 基因组DNA的提取和纯化 2. DNA限制性内切酶酶切分析 | 8 | 1.肝组织中基因组DNA的提取 2.DNA限制性内切酶酶切分析 3.电泳观察酶切条带 | |
3 | 1.DNA片段的连接及转化 2.重组子的筛选和鉴定 | 7 | 1.细菌感受态的制备 2.质粒转化原理、摇菌及涂板 3.蓝-白筛选的原理、结果分析 | |
4 | 1.RNA的分离纯化 2.逆转录PCR | 7 | 1.RNA分离纯化的原理和方法、定量技术 2.聚合酶链反应的原理和方法 3.PCR扩增仪，荧光分析仪的使用 | |
核酸技术S1 | 1 | 1. 质粒DNA的提取和纯化 2.DNA电泳检测，纯度和浓度的测定 | 7 | 1.碱裂解法提取质粒DNA 2.琼脂糖凝胶电泳观察、判断提取结果 |
2 | 分子克隆（一） 1. 基因组DNA的提取和纯化 2. DNA限制性内切酶酶切分析 | 7 | 1.肝组织中基因组DNA的提取 2.DNA限制性内切酶酶切分析 3.电泳观察酶切条带 | |
3 | 分子克隆（二） 1.DNA片段的连接及转化 2.重组子的筛选和鉴定 | 7 | 1.细菌感受态的制备 2.质粒转化原理、摇菌及涂板 3.蓝-白筛选的原理、结果分析 | |
4 | 1.RNA的分离纯化 2.逆转录PCR | 7 | 1.RNA分离纯化的原理和方法、定量技术 2.聚合酶链反应的原理和方法 3.PCR扩增仪，荧光分析仪的使用 | |
蛋白技术S2 | 1 | 蛋白定量分析 Western-blot检测 | 7 | 1.SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 2.测定蛋白质分子量 3.Western-blot的基本原理 4.Western-blot的实验操作 |